Parameterdetails

Parametername: Ammoniak

Version: 3 Gültig ab 15.05.2020

Beschreibung* Quantitative Bestimmung von Ammoniak in Humanplasma mittels eines enzymatischen Tests.

Ziel und Zweck der Untersuchung Ammoniak wird vorwiegend im Magen-Darm-Trakt durch Metabolisierung stickstoffhaltiger Verbindungen erzeugt. Übermäßige Ammoniakmengen können toxisch auf das Zentralnervensystem wirken.
Beim Säugling oder Kleinkind kann eine Hyperammonämie entweder durch einen erblichen Enzymmangel im Harnstoffzyklus bedingt oder durch akute (wie beim Reye-Syndrom) oder chronische Lebererkrankungen (wie bei Zirrhose) erworben sein.
Erhöhte Ammoniakspiegel beim Erwachsenen können bei der Diagnose von Leberversagen oder Encephalopathia hepatica aufgrund fortgeschrittener Lebererkrankungen, wie Virushepatitis oder Zirrhose, nützlich sein.

Prinzip des Verfahrens Enzymatische Methode mit Glutamatdehydrogenase.
Die Glutamatdehydrogenase (GLDH) katalysiert die reduktive Aminierung von 2-Oxoglutarat mit NH4+ und NADPH, bei der Glutamat und NADP+ entstehen.
Die Konzentration des gebildeten NADP+ ist direkt proportional zur Ammoniakkonzentration. Sie wird durch Messung der Extinktionsabnahme bestimmt.

Literatur [1] Thomas L. Labor und Diagnose.
[2] Packungsbeilage
[3] The evidence based practice for optimal sample quality for ammonia measurement

Ergebniseinheit µmol/l

Einheiten(sonstige) µg/dl

Synonyme NH3

Analysenfrequenz täglich

Nachforderungsmöglichkeit der Analyse
(Stunden, Tage) keine, sofort bestimmen!

Spezimen
(Plasma, Serum, Harn) nur K-EDTA-Plasma (hämolyse-u. lipämiefrei)

Sammelperiode nicht zutreffend

Mindestvolumen pro Anforderung vor Zentrifugation
(vor Zentrifugation) mind. 200µl (die Probenröhrchen sollten ganz gefüllt und stets gut verschlossen werden)

Abnahmegefäß inkl. Zusatzstoffe K-EDTA Monovette

Abnahmegefäß inkl. Zusatzstoffe(sonstige) keine

Spezielle Präanalytik - Probentransport - Venenpunktion (ungestaut!) od. kapilläre Abnahme
- nüchtern Patienten
- vor der Probenentnahme sollte nicht geraucht werden
- Proberöhrchen ganz gefüllt und stets gut verschlossen aufbewahren
- Probe sofort auf Eis legen
- Eine Verunreinigung der Proben mit Ammoniak durch Rauchen oder Autoabgase im Labor oder Patientenzimmer ist zu vermeiden.

INTERN:
- Transport gekühlt (Coolpacks) mittels Rohrpost

EXTERN:
- nicht sinnvoll, da sich die Ammoniakkonzentration in vitro durch den Abbau
stickstoffhaltiger Plasmabestandteile erhöhen kann. Eine bekannte Quelle spontaner Ammoniakbildung bei der Lagerung bei über ‑38 °C ist eine erhöhte γ‑Glutamyltransferaseaktivität, die zur Spaltung von Glutamin führt.

Messbereich 10 - 700 µmol/l

Allgemeine Störungen
(z.B. Lipämie, Hämolyse, Bilirubinämie) Als Bewertung gilt: Wiederfindung ± 10 % von Ausgangswerten bei einer Ammoniakkonzentration von 50 μmol/l.

Ikterus: Keine wesentliche Beeinflussung bis zu einem Index I von 10 (ca.10 mg/dl konjugiertes Bilirubin) und 30 (ca. 30 mg/dl unkonjugiertes Bilirubin).

Hämolyse: Keine wesentliche Beeinflussung bis zum Index H von 200 (ca. 200 mg/dl Hämoglobin). Die Kontamination mit Erythrozyten führt zu erhöhten Werten, da die Analytkonzentration in Erythrozyten höher als in normalem Plasma ist.

Lipämie (nativ): Keine wesentliche Beeinflussung bis zum Index L von 50.

γ-Globulin: Bei Zugabe von 3 g/dl γ-Globulin zu einem Humanplasmapool kommt es zu einem signifikanten Anstieg der Ammoniakkonzentration.

Medikamente: Cefoxitin und Intralipid führen in therapeutischen Konzentrationen zu falsch hohen bzw. falsch niedrigen Ammoniakwerten.

Therapeutische Plasmakonzentrationen von Sulfasalazin und Sulfapyridin können zu falschen Ergebnissen führen. Temozolomid in therapeutischen
Konzentrationen kann zu falsch niedrigen Werten führen.

In sehr seltenen Fällen kann eine Gammopathie, insbesondere vom Typ IgM (Waldenström-Makroglobulinämie), zu unzuverlässigen Ergebnissen führen.

Kreuzreaktionen
(z.B. immunologisch) nicht zutreffend

Kennzeichnung des Analyse-Verfahrens nach MPG / IVDR CE-IVD Zertifikat

Ausdruck gültig am 21.09.2020

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