Beschreibung*
Qualitative Bestimmung von Antikörpern (einschließlich IgG) gegen SARS-CoV-2 in Humanserum mittels eines immunologischen Elektrochemolumineszenz Assays (ECLIA).
Ziel und Zweck der Untersuchung
Der Elecsys Anti SARS CoV 2 Test verwendet für die Bestimmung von Antikörpern (hoch avide Antikörper ohne Definition der Immunglobulinklasse) gegen SARS CoV 2 ein rekombinantes Protein, welches das Nukleokapsid (N )Antigen repräsentiert. Die qualitative Bestimmung erfolgt mittels eines immunologischen Elektrochemolumineszenz-Assay (ECLIA). Der Assay wird in Verbindung mit dem klinischen Bild und weiteren Labortests als Hilfsmittel zur Diagnose einer SARS-CoV-2-Infektion eingesetzt. Die Ergebnisse des Assays sollten nicht als alleinige Grundlage für die Diagnose verwendet werden. Weiterhin kann die Serologie zur Erhebung epidemiologischer Daten verwendet werden. Zur Diagnose einer SARS-CoV-2-Infektion ist der positive Nachweis von viraler RNA (aus Abstrichen der oberen ode runteren Atemwege) mittels Reverse-Transkriptase-Polymerasekettenreaktion (RT-PCR) dem Nachweis von Virusprotein mittels ELISA überlegen. Die Diagnose einer akuten Infektion mit SARS-CoV-2 auf Basis einer einmaligen Bestimmung der Antikörper ohne Zusammenschau mit klinischen Symptomen ist nicht empfohlen. Ein positives Antikörpertestergebnis kann bei (klinischen) Verdachtsfällen (z.B. Patienten mit typischen radiologische Befunde und Symptomen) aber negativem PCR-Ergebnis (z. B. aufgrund eines zu späten Abstrichs oder fehlerhafter Präanalytik) die Diagnose erhärten. Für aussagekräftige serologische Ergebnisse sollten 2 Patientenproben untersucht werden, eine aus der akuten (Woche 1 der Erkrankung) und eine aus der Rekonvaleszenzphase (3 bis 4 Wochen später), um nach Möglichkeit eine Serokonversion zu dokumentieren. Bei asymtomatischen Personen oder bei Patieten mit untypischer klinischer Präsentation ist die Aussagekraft eines positiven Antikörpertests (ohne dokumentiere Serokonversion) derzeit gering. Aufgrund möglicher Kreuzreaktivitäten mit anderen Betacoronaviren und anderen Antikörpern (z. B. Rheumafaktor) und nach derzeitigem Wissensttand (Mai 2020) geringer Prävalenz in der österreichischen Bevölkerung ist mit einer anteilsmäßig erheblichen Anzahl an falsch positiven Testergebnissen zu rechnen. Die Sensitivität des Tests liegt > 14 Tage nach erstmals pos. PCR bei 99,5%, die untere 95% Konfidenzgrenze bei 97,0% (Herstellerangabe; n=185) bzw. 94,4% (eigene Validierung; n=90; >14 d nach erstmals pos. PCR). Die Spezifität wurde vom Hersteller anhand von 10.453 Proben ermittelt und betrug 99,80%, die untere 95% Konfidenzgrenze bei 99,69% (eigene in house Validierung der Spezifität: 99,6%, n=270). Der Elecsys Anti‑SARS‑CoV‑2 Test wurde mit einem VSVh)‑basierten Pseudo-Neutralisationstest verglichen. Die Ergebnisse für 46 klinische Proben von Einzelpatienten: Positive Übereinstimmung: 86.4 % (95 % CI: 73.3‑93.6 %) Negative Übereinstimmung: 100 % (95 % CI: 34.2‑100 %) Gesamtübereinstimmung: 87.0 % (95 % CI: 74.3‑93.9 %) Als positiver Cutoff-Wert für den Pseudo-Neutralisationstest wurde ein Titer von 1:20 verwendet. Für aktuelle Bewertungen der SARS-CoV-2 Labordiagnostik siehe auch die Webseite der ÖGLMKC (https://www.oeglmkc.at/corona.html) bzw. den Artikel https://www.kup.at/kup/pdf/14661.pdf .
Prinzip des Verfahrens
▪ 1. Inkubation: 12 µl Probe, biotinyliertes SARS‑CoV‑2‑spezifisches rekombinantes Antigen und mit Ruthenium-Komplex) markiertes SARS‑CoV‑2‑spezifisches rekombinantes Antigen bilden einen Sandwich-Komplex. ▪ 2. Inkubation: Nach Zugabe von Streptavidin-beschichteten Mikropartikeln wird der Komplex über Biotin-Streptavidin Wechselwirkung an die Festphase gebunden. ▪ Das Reaktionsgemisch wird in die Messzelle überführt, wo die Mikropartikel durch magnetische Wirkung auf die Oberfläche der Elektrode fixiert werden. Danach werden die ungebundenen Substanzen mit ProCell/ProCell M entfernt. Durch Anlegen einer Spannung wird die Chemilumineszenzemission induziert und mit dem Photomultiplier gemessen. ▪ Durch Vergleich des Elektrochemilumineszenz-Signals aus dem Reaktionsprodukt der Probe mit dem Signal des Grenzwerts (Cutoffs), der zuvor durch eine Kalibration erhalten wurde, wird das Ergebnis durch die Software automatisch ermittelt.
Literatur
1. To KK, Tsang OT, Leung WS et al. Temporal profiles of viral load in posterior oropharyngeal saliva samples and serum antibody responses during infection by SARS-CoV-2: an observational cohort study. Lancet Infect Dis. 2020; doi: 10.1016/S1473-3099(20)30196-1. 2. WHO. Laboratory testing for coronavirus disease (COVID-19) in suspected human cases. Interim Guidance, March 19, 2020. https://apps.who.int/iris/handle/10665/331501 (zuletzt gesehen: 8.4.2020). 3. SARS-CoV-2 - Steckbrief zur Coronavirus-Krankheit-2019 (COVID-19). https://www.rki.de/DE/Content/InfAZ/N/Neuartiges_Coronavirus/Steckbrief.html?nn=13490888 (zuletzt gesehen: 8.4.2020). 4. SORA-Ergebnisse der repräsantiven Stichprobe COVID-19 - COVID-19 Prävalenz. https://www.sora.at/nc/news-presse/news/news-einzelansicht/news/covid-19-praevalenz-1006.html (zuletzt gesehen: 14.4.2020). 5. COVID-19, EU recommendations for testing strategies. https://ec.europa.eu/info/live-work-travel-eu/health/coronavirus-response/public-health_en (zuletzt gesehen: 8.4.2020). 6. Carraro P, Plebani M. Errors in a stat laboratory: types and frequencies 10 years later. Clin Chem. 2007; 53: 1338-42. 7. Plebani M. Exploring the iceberg of errors in laboratory medicine. Clin Chim Acta. 2009; 404: 16-23. 8. Lippi G, Simundic AM, European Federation for Clinical C, Laboratory Medicine Working Group for Preanalyti-cal P. The EFLM strategy for harmonization of the preanalytical phase. Clin Chem Lab Med. 2018; 56: 1660-66. 9. Lippi G, Plebani M. The critical role of laboratory medicine during coronavirus disease 2019 (COVID-19) and other viral outbreaks. Clin Chem Lab Med. 2020; doi: 10.1515/cclm-2020-0240. 10. Lippi G, Simundic AM, Plebani M. Potential preanalytical and analytical vulnerabilities in the laboratory diag-nosis of coronavirus disease 2019 (COVID-19). Clin Chem Lab Med. 2020; doi: 10.1515/cclm-2020-0285. 11. Hu Z, Song C, Xu C et al. Clinical characteristics of 24 asymptomatic infections with COVID-19 screened among close contacts in Nanjing, China. Sci China Life Sci. 2020; doi: 10.1007/s11427-020-1661-4. 12. Tang YW, Schmitz JE, Persing DH, Stratton CW. The Laboratory Diagnosis of COVID-19 Infection: Current Issues and Challenges. J Clin Microbiol. 2020; doi: 10.1128/JCM.00512-20. 13. Interim Guidelines for Collecting, Handling, and Testing Clinical Specimens from Persons Under Investigation (PUIs) for Coronavirus Disease 2019 (COVID-19). https://www.cdc.gov/coronavirus/2019-ncov/lab/guidelines-clinical-specimens.html (zuletzt gesehen: 7.4.2020). 14. Wolfel R, Corman VM, Guggemos W et al. Virological assessment of hospitalized patients with COVID-2019. Nature. 2020; doi: 10.1038/s41586-020-2196-x. 15. WHO interim guidance for laboratory biosafety related to COVID-19 virus. March 19, 2020. https://www.who.int/emergencies/diseases/novel-coronavirus-2019/technical-guidance/laboratory-guidance (zu-letzt gesehen: 8.4.2020). 16. Hinweise zur Testung von Patienten auf Infektion mit dem neuartigen Coronavirus SARS-CoV-2. https://www.rki.de/DE/Content/InfAZ/N/Neuartiges_Coronavirus/Vorl_Testung_nCoV.html?nn=13490888 (zuletzt gesehen: 8.4.2020). 17. Zou L, Ruan F, Huang M et al.. SARS-CoV-2 Viral Load in Upper Respiratory Specimens of Infected Patients. N Engl J Med. 2020; 382: 1177-79. 18. Young BE, Ong SWX, Kalimuddin S et al. Epidemiologic Features and Clinical Course of Patients Infected With SARS-CoV-2 in Singapore. JAMA. 2020; doi: 10.1001/jama.2020.3204. 19. Novel coronavirus (SARS-CoV-2) - Discharge criteria for confirmed COVID-19 cases - When is it safe to dis-charge COVID-19 cases from the hospital or end home isolation? https://www.ecdc.europa.eu/sites/default/files/documents/COVID-19-Discharge-criteria.pdf (zuletzt gesehen: 8.4.2020). 20. Ai T, Yang Z, Hou H et al. Correlation of Chest CT and RT-PCR Testing in Coronavirus Disease 2019 (COVID-19) in China: A Report of 1014 Cases. Radiology. 2020; doi: 10.1148/radiol.2020200642: 200642. 21. New York SARS-CoV-2 Real-time RT-PCR Diagnostic Panel, updated March 15, 2020. https://www.fda.gov/media/135662/download (zuletzt gesehen: 7.4.2020). 22. Shen Z, Xiao Y, Kang L et al. Genomic diversity of SARS-CoV-2 in Coronavirus Disease 2019 patients. Clin Infect Dis. 2020; doi: 10.1093/cid/ciaa203. 23. Anzahl der Testungen und bestätigten Erkrankungsfälle des Coronavirus (COVID-19) in Österreich. https://de.statista.com/statistik/daten/studie/1093285/umfrage/testungen-und-erkrankungsfaelle-des-coronavirus-2019-ncov-in-oesterreich/ (zuletzt gesehen: 9.4.2020). 24. GISAID Genomic epidemiology of hCoV-19. . https://www.gisaid.org/ (zuletzt gesehen: 8.4.2020). 25. Petherick A. Developing antibody tests for SARS-CoV-2. Lancet. 2020; 395: 1101-02. 26. Amtsblatt der Europäischen Union vom 15.04.2020. Leitlinien für In-vitro-Tests zur Diagnose von COVID-19 und deren Leistung (2020/C 122 I/01). 27. Jiang S, Hillyer C, Du L. Neutralizing Antibodies against SARS-CoV-2 and Other Human Coronaviruses. Trends Immunol. 2020; doi: 10.1016/j.it.2020.03.007. 28. Wang D, Hu B, Hu C et al. Clinical Characteristics of 138 Hospitalized Patients With 2019 Novel Coronavirus-Infected Pneumonia in Wuhan, China. JAMA. 2020; doi: 10.1001/jama.2020.1585. 29. Chen N, Zhou M, Dong X et al. Epidemiological and clinical characteristics of 99 cases of 2019 novel corona-virus pneumonia in Wuhan, China: a descriptive study. Lancet. 2020; 395: 507-13. 30. Lippi G, Plebani M. Laboratory abnormalities in patients with COVID-2019 infection. Clin Chem Lab Med. 2020; doi: 10.1515/cclm-2020-0198. 31. Han H, Yang L, Liu R et al. Prominent changes in blood coagulation of patients with SARS-CoV-2 infection. Clin Chem Lab Med. 2020; doi: 10.1515/cclm-2020-0188. 32. Qu R, Ling Y, Zhang YH, Wei LY et al. Platelet-to-lymphocyte ratio is associated with prognosis in patients with coronavirus disease-19. J Med Virol. 2020; doi: 10.1002/jmv.25767.
Ergebniseinheit
Einheiten(sonstige)
Qualitativ (Positiv/Negativ)
Synonyme
SARS-Coronavirus-2-Antikörper SARS-CoV-2-AK COVID-19-Antikörper
Analysenfrequenz
täglich
Nachforderungsmöglichkeit der Analyse
(Stunden, Tage)
bis 7 Tage
Spezimen
(Plasma, Serum, Harn)
Serum
Sammelperiode
nicht zutreffend
Mindestvolumen pro Anforderung vor Zentrifugation
(vor Zentrifugation)
500 µl
Abnahmegefäß inkl. Zusatzstoffe
Serum Monovette
Spezielle Präanalytik - Probentransport
- Venenpunktion INTERN: - Transport über Rohrpost oder Postweg EXTERN: - abzentrifugiertes Plasma muss spätestens 7 Tage nach Blutabnahme am ZIMCL eintreffen. Die Probe gekühlt (2-8°C) versenden!
Messbereich
CutOff<1 ist negativ, CutOff>=1,0 ist positiv, die Größe des gemessenen Ergebnisses über dem CutOff-Wert ist kein Hinweis auf die Gesamtmenge an antikörpern in der Probe.
Allgemeine Störungen
(z.B. Lipämie, Hämolyse, Bilirubinämie)
Um falsche Ergebnisse zu vermeiden, dürfen Proben nicht nachträglich durch Zusätze (z. B. Biozide, Antioxidantien oder Substanzen, die möglicherweise den pH‑Wert oder die Ionenstärke der Probe beeinflussen) verändert werden. keine Störung bis zur angegebenen Konzentration: Biotin: <=4912 nmol/l (=1200ng/ml). Bilirubin ≤ 1129 μmol/L oder ≤ 66 mg/dL Hämoglobin ≤ 1000 mg/dL oder ≤ 10 g/L Intralipid ≤ 2000 mg/dL Rheumafaktoren ≤ 1200 IU/mL IgG ≤ 7.0 g/dL oder ≤ 70 g/L IgA ≤ 1.6 g/dL oder ≤ 16 g/L IgM ≤ 1.0 g/dL oder ≤ 10 g/L Potenzielle Interferenzen durch andere pharmazeutische Verbindungen als Biotin wurden nicht untersucht und können daher nicht ausgeschlossen werden.
Kreuzreaktionen
(z.B. immunologisch)
Von 792 getesteten Proben mit potenzieller Kreuzreaktivität ergaben 4 Proben mit dem Elecsys Anti‑SARS‑CoV‑2 Test ein reaktives Ergebnis. Die daraus resultierende analytische Gesamtspezifität in dieser Kohorte betrug 99.5 %. Details siehe Packungsbeilage
Kennzeichnung des Analyse-Verfahrens nach MPG / IVDR
CE-IVD Zertifikat laut Beipack
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